本公司所有产品仅供科学实验,不做其他科学实验外的使用!
产品名称 | 人外周血树突状细胞(DC细胞) | 组织来源 | 外周血 |
规格 | 5×10⁵Cells/T25培养瓶 | 包装 | T25培养瓶 |
货号 | GOY-01X1222 | 细胞形态 | 树突状 |
人外周血DC分离自外周血,由外周血单核细胞诱导而成的;外周血是除骨髓之外的血液,临床上常用一些方法把骨髓中的造血干细胞释放到血液中,再在从血液中提取分离得到造血干细胞,我们把这样得到的干细胞称为外周血干细胞,在二十一世纪初人类开始的生命方舟计划中提出外周血这一新概念。DC细胞,全称树突状细胞(DC),是近年来倍受们关注的专职抗原呈递细胞(APC),能摄取、加工及呈递抗原,启动T细胞介导的免疫反应。由美国学者Steinman于1973年在淋巴结中发现,从脾脏中分离出一类与粒细胞、巨噬细胞和淋巴细胞形态和功都不同的白细胞,因其细胞膜向外伸出,形成与神经细胞轴突相似的膜性树状突起,故而命名为树突状细胞。未成熟DC具有较强的迁移能力,成熟DC能有效激活初始型T细胞,处于启动、调控、并维持免疫应答的中心环节。
方法简介:
公司实验室分离的人外周血DC采用密度梯度离心法分离外周血单个核细胞、培养过程添加细胞因子诱导而来,细胞总量约为5×10?cells/瓶。
质量检测:
公司实验室分离的人外周血树突状(DC细胞)经CD86免疫荧光鉴定,纯度可达90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
培养基 含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等
换液频率 每2-3天换液一次
生长特性 半贴半悬浮
细胞形态 树突状
传代特性 属于高度分化细胞;属于不增殖细胞群
消化液 0.25%yi蛋白酶
培养条件 气相:空气,95%;CO2,5%
准备工作
1. 实验器材准备:准备无菌的培养皿、培养瓶、移液管、离心管、手术器械等,并进行高压灭菌或其他合适的消毒处理。
2. 试剂准备:配制或购买合适的培养基、消化酶(如、胶原酶等)、胎牛血清、双抗等试剂,确保其无菌且在有效期内。
3. 实验动物或组织来源准备:根据实验需求,选择合适的动物并进行相应的麻醉或处死,获取所需组织;或从已有的组织样本库中获取组织。
取材与处理
1. 取材:在无菌条件下,迅速取出目标组织,尽量减少对组织的损伤,并去除多余的脂肪、结缔组织等非目的组织。
2. 清洗:将取出的组织用预冷的无菌PBS冲洗数次,以去除血液和杂质。
3. 剪切:将组织剪成约1 - 2mm³的小块,以便后续消化。
细胞分离
1. 消化:将剪碎的组织块放入含有适量消化酶的离心管中,在37℃恒温摇床或培养箱中消化一段时间。期间可轻轻摇晃离心管,使消化更均匀。
2. 终止消化:当组织块大部分被消化成单细胞悬液或小细胞团时,加入含血清的培养基终止消化。
3. 过滤与离心:用细胞筛过滤细胞悬液,去除未消化的组织碎片,然后将滤液以适当的转速离心,收集细胞沉淀。
细胞观察与检测
1. 日常观察:每天用倒置显微镜观察细胞的形态、生长状态、密度等,记录细胞的变化情况,如发现细胞污染或异常,及时采取相应措施。
2. 细胞计数与活力检测:在需要时,可采用台盼蓝染色等方法对细胞进行计数和活力检测,以了解细胞的生长情况和健康状态。
人肺粘液上皮样癌细胞;NCI-H292 | 人侵袭性脉络膜黑色瘤细胞;MuM-2C |
人低侵袭性脉络膜黑色瘤细胞;OCM-1A | Skirrow琼脂基础 |
人胚肝二倍体细胞;CCC-HEL-1 | 改良CCD琼脂基础 |
小鼠淋巴瘤细胞;P388D1(IL-1) | 布氏肉汤 |
人胃腺癌细胞;SGC-7901[SGC7901] | 哥伦比亚血琼脂基础 |
人乳腺导管癌细胞;ZR-75-30 | 改良布氏肉汤培养基 |
绿色荧光蛋白标记小鼠子宫颈癌细胞;U14-GFP | 葡萄球菌培养基0 |
大鼠皮下微血管内皮细胞 | 20%氯化钠胰蛋白胨大豆肉汤 |
人膀胱癌细胞;5637(HTB-9) | Bolton肉汤基础 |
人低分化肺腺癌细胞;SK-LU-1 | DYS耶尔森菌琼脂 |
小鼠子宫颈癌细胞;U14 | SSDC培养基 |
人肾透明细胞腺癌细胞;786-O[786-0] | ITC肉汤基础 |
人胰腺导管癌细胞;CFPAC-1 | 人外周血树突状细胞(DC细胞)改良的酵母浸汁-孟加拉红肉汤 |
人肾透明细胞癌;Caki-1 | 改良克氏双糖铁培养基 |
RPMI 1640 Medium, Powder Gibco | 改良Y培养基 |
一、取材与分离
1. 快速操作
- 组织取材后需立即处理,避免长时间暴露于室温或非营养环境。
- 使用无菌 PBS 或生理盐水冲洗组织,去除血液、杂质。
2. 消化酶选择
- 根据组织类型选择消化酶,避免过度消化导致细胞损伤。
- 消化时间需严格控制(通常 10-30 分钟),可通过显微镜观察细胞解离状态。
二、培养条件优化
1. 培养基选择
- 使用含血清或特定生长因子的培养基(如 DMEM、RPMI 1640 等),部分细胞需添加胰岛素、EGF 等。
- 避免频繁更换培养基品牌或批次,减少细胞适应压力。
2. 贴壁与传代
- 原代细胞贴壁能力较弱,可能需要包被培养皿(如胶原蛋白、多聚赖氨酸)。
- 传代时密度建议控制在 70%-80%,过度汇合会导致接触抑制和分化。
三、污染控制
1. 无菌操作
- 全程在超净台操作,使用一次性耗材,避免交叉污染。
- 培养基中可添加双抗,但长期使用可能影响细胞活性。
2. 支原体检测
- 定期检测支原体污染(如 PCR 法),污染后需及时丢弃细胞。
四、状态监控
1. 日常观察
- 每天检查细胞形态、密度及培养基颜色,及时更换培养基(通常每 2-3 天换液一次)。
- 异常形态(如细胞变圆、碎片增多)可能提示污染或营养不足。
2. 传代与冻存
- 原代细胞分裂次数有限(一般 5-10 代),需及时冻存早期代次细胞。
- 冻存液建议使用 DMSO+血清(或专用冻存培养基),梯度降温后液氮保存。