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小鼠口腔上皮细胞

【概要描述】小鼠口腔上皮细胞公司正在出售的产品:SUNE-2人鼻咽癌细胞Lu-134-B小细胞肺癌Lu-139小细胞肺癌Lu-140小细胞肺癌Lu-143小细胞肺癌Lu-24小细胞肺癌MS-1-L小细胞肺癌NCI-H1048小细胞肺癌NCI-H1341小细胞肺癌NCI-H1417 [H1417]小细胞肺癌

型号: 点击量:482 厂商性质:代理商 更新日期:2025-03-21
产品详情

本公司所有产品仅供科学实验,不做其他科学实验外的使用!
小鼠口腔上皮细胞

产品名称

小鼠口腔上皮细胞

组织来源

口腔黏膜组织

规格

5×10⁵Cells/T25培养瓶

包装

T25培养瓶

货号

GOY-01X1355

细胞形态

上皮细胞样


小鼠口腔上皮细胞

小鼠口腔上皮分离自口腔黏膜组织;口腔上皮细胞是一种上皮细胞,呈扁平、多边形,形状不规则。口腔各壁都有黏膜覆盖,口腔上皮细胞主要分布在口腔两侧颊部。上皮的垂直切面上,细胞形状不一。紧靠基膜的一层基底细胞为矮柱状,为具有增殖分化能力的干细胞,部分子细胞向浅层移动。基底层以上是数层多边形细胞,再上为几层梭形或扁平细胞。仅靠近表面几层细胞为扁平状,基底层细胞能不断分裂增生,以补充表层衰老或损伤脱落的细胞。复层扁平上皮深层的结缔组织内有丰富的毛细血管,有利于复层扁平上皮的营养。
方法简介:

公司实验室分离的小鼠口腔上皮先中性dan白酶消化、后yi蛋白酶-胶原酶混合消化法制备而来,细胞总量约为5×10?cells/瓶。
质量检测:

公司实验室分离的小鼠口腔上皮经Cytokeratin-18免疫荧光鉴定,纯度可达90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

 


小鼠口腔上皮细胞

小鼠口腔上皮细胞

包被条件 鼠尾胶原Ⅰ(2-5μg/cm2)

培养基 FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等

换液频率 2-3天换液一次

生长特性 贴壁

细胞形态 上皮细胞样

传代特性 可传1代

消化液 0.25%yi蛋白酶

培养条件 气相:空气,95%;CO2,5%

小鼠口腔上皮细胞

准备工作

1. 实验器材准备:准备无菌的培养皿、培养瓶、移液管、离心管、手术器械等,并进行高压灭菌或其他合适的消毒处理。

2. 试剂准备:配制或购买合适的培养基、消化酶(如、胶原酶等)、胎牛血清、双抗等试剂,确保其无菌且在有效期内。

3. 实验动物或组织来源准备:根据实验需求,选择合适的动物并进行相应的麻醉或处死,获取所需组织;或从已有的组织样本库中获取组织。

取材与处理

1. 取材:在无菌条件下,迅速取出目标组织,尽量减少对组织的损伤,并去除多余的脂肪、结缔组织等非目的组织。

2. 清洗:将取出的组织用预冷的无菌PBS冲洗数次,以去除血液和杂质。

3. 剪切:将组织剪成约1 - 2mm³的小块,以便后续消化。

细胞分离

1. 消化:将剪碎的组织块放入含有适量消化酶的离心管中,在37℃恒温摇床或培养箱中消化一段时间。期间可轻轻摇晃离心管,使消化更均匀。

2. 终止消化:当组织块大部分被消化成单细胞悬液或小细胞团时,加入含血清的培养基终止消化。

3. 过滤与离心:用细胞筛过滤细胞悬液,去除未消化的组织碎片,然后将滤液以适当的转速离心,收集细胞沉淀。

细胞观察与检测

1. 日常观察:每天用倒置显微镜观察细胞的形态、生长状态、密度等,记录细胞的变化情况,如发现细胞污染或异常,及时采取相应措施。
2. 细胞计数与活力检测:在需要时,可采用台盼蓝染色等方法对细胞进行计数和活力检测,以了解细胞的生长情况和健康状态。

小鼠口腔上皮细胞

小鼠口腔上皮细胞

人涎腺腺样囊性癌细胞;ACC-2

人卵巢癌细胞;Anglne

人肺腺癌细胞;SPC-A-1

鹿衔草 对照药材

T淋巴瘤细胞;HUT 102

番石榴叶 对照药材

Hela 细胞耐药亚株;HeLa /DDP

槐角 对照药材

COC1细胞耐药亚株;COC1/DDP

矮地茶 对照药材

人肝癌细胞;SMMC-7721

布渣叶 对照药材

人结直肠腺癌细胞;SW480 [SW 480;SW-480]

松塔 对照药材

小鼠睾丸上皮细胞15P-1(干细胞库保藏)

葶苈子(播娘蒿) 对照药材

人舌鳞癌细胞;Tca-8113 [Tca8113]

皂角刺 对照药材

人肝癌细胞;Hep-3B [Hep3B]

牛大力(美丽崖豆藤) 对照药材

人胎盘绒膜癌细胞;BeWo

乌梅 对照药材

人成骨肉瘤细胞;MG-63

水翁花 对照药材

人成骨肉瘤细胞;Saos-2

小鼠口腔上皮细胞毛诃子 对照药材

人膀胱移行细胞癌细胞;T24

天山雪莲 对照药材

5-磷吡哆醛

细辛(北细辛) 对照药材


小鼠口腔上皮细胞

一、取材与分离

1. 快速操作

- 组织取材后需立即处理,避免长时间暴露于室温或非营养环境。

- 使用无菌 PBS 或生理盐水冲洗组织,去除血液、杂质。

2. 消化酶选择

- 根据组织类型选择消化酶,避免过度消化导致细胞损伤。

- 消化时间需严格控制(通常 10-30 分钟),可通过显微镜观察细胞解离状态。

二、培养条件优化

1. 培养基选择

- 使用含血清或特定生长因子的培养基(如 DMEM、RPMI 1640 等),部分细胞需添加胰岛素、EGF 等。

- 避免频繁更换培养基品牌或批次,减少细胞适应压力。

2. 贴壁与传代

- 原代细胞贴壁能力较弱,可能需要包被培养皿(如胶原蛋白、多聚赖氨酸)。

- 传代时密度建议控制在 70%-80%,过度汇合会导致接触抑制和分化。

三、污染控制

1. 无菌操作

- 全程在超净台操作,使用一次性耗材,避免交叉污染。

- 培养基中可添加双抗,但长期使用可能影响细胞活性。

2. 支原体检测

- 定期检测支原体污染(如 PCR 法),污染后需及时丢弃细胞。

四、状态监控

1. 日常观察

- 每天检查细胞形态、密度及培养基颜色,及时更换培养基(通常每 2-3 天换液一次)。

- 异常形态(如细胞变圆、碎片增多)可能提示污染或营养不足。

2. 传代与冻存

- 原代细胞分裂次数有限(一般 5-10 代),需及时冻存早期代次细胞。

- 冻存液建议使用 DMSO+血清(或专用冻存培养基),梯度降温后液氮保存。



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