试剂操作：规范与细节
试剂平衡：试剂盒从冷藏环境中取出后，应在室温平衡15-30分钟后方可使用。
洗涤液配置：用蒸馏水1:20稀释（示例：1ml浓缩洗涤液加入19ml的蒸馏水）。
标准品配制：取7个1.5ml离心管，分别标注1/2,1/4,1/8,1/16,1/32,1/64,blank。从至七管中分别加入标准品/样品稀释液200ul。在管中加入标准品溶液200ul，置于漩涡混合器上混匀后用加样器吸出200ul，移至第二管。
加样规范：各步加样均应使用加样器，并经常校对其准确性，以避免试验误差。一次加样时间控制在5分钟内，如标本数量多，推荐使用排枪加样。
封板膜使用：封板膜只限一次性使用，以避免交叉污染。
底物保存：底物请避光保存。
在完成标准品梯度稀释后，需特别注意标准曲线建立的精确性。建议采用双复孔检测模式，每次加样前需轻柔涡旋混匀3秒，避免产生气泡影响吸光度读数。对于低浓度样本（如1/64管），建议延长离心时间至5分钟（1000×g）以提高沉淀回收率。
实际操作中需监控三个关键控制点：一是移液器枪头需浸入液面下2mm再缓慢释放，防止液体挂壁；二是酶标板读数前需用无尘纸轻拭底部光路区域；三是当室温低于20℃时，应将底物预热至37℃后再使用。特殊样本（如溶血或脂血标本）需进行10倍稀释后重新检测，并在报告中注明修正系数。
建议每批次实验设置质控血清，其回收率应控制在95%-105%之间。若发现标准曲线R²值＜0.99，需检查以下环节：稀释枪头是否带残留液体、酶标板孔是否存有交叉污染、温育时间是否准确。对于临界值样本，推荐采用原倍和1:2稀释双孔复测取均值。
